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    Plan détaillé Texte intégral Gorgement direct sur animaux Gorgement sur membrane Infection par capillaire Injection directe de pathogènes dans la tique Infection par immersion des tiques Bibliographie Auteurs

    Tiques et maladies à tiques

    Ce livre est recensé par

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    Table des matières

    Annexe 2

    Revue bibliographique des méthodes de gorgement et d’infection des tiques

    Sarah Bonnet et Nathalie Boulanger

    p. 287-294

    Texte intégral Bibliographie Auteurs

    Texte intégral

    1L’étape, sans aucun doute la plus difficile pour maintenir des tiques en élevage afin de les étudier, réside dans la réalisation de leur gorgement sanguin. Hématophages strictes, les tiques ont en effet les modalités de gorgement les plus complexes et les temps de gorgement les plus longs parmi les arthropodes hématophages. Les tiques s’infectant à la faveur de la prise de leur repas sanguin, la mise au point de méthodes d’infection en laboratoire est aussi essentielle afin d’étudier les systèmes complexes formés par les agents infectieux et leurs vecteurs.

    Gorgement direct sur animaux

    2Plusieurs techniques ont été développées à la fois pour gorger des tiques en élevage et pour les infecter par divers agents pathogènes (Bonnet et Liu, 2012). Parmi elles, celle qui se rapproche le plus de la réalité physiologique consiste à gorger des tiques sur des animaux vigiles, infectés ou non, et maintenus en laboratoire. Cette technique a été utilisée pour nourrir diverses espèces de tiques dont Rhipicephalus evertsi evertsi (Londt et Vanderbijl, 1977), I. scapularis, I. pacificus, A. americanum, Dermacentor occidentalis, D. variabilis, Haemaphysalis leporispalustris, R. sanguineus (Troughton et Levin, 2007), R. appendiculatus (Bailey, 1960 ; Musyoki et al., 2004), A. variegatum (Voigt et al., 1993), D. andersoni (Howarth et Hokama, 1983 ; Kocan et al., 1986), A. hebraeum (Heyne et al., 1987) et I. ricinus (Mbow et al., 1994), sur des souris ou des lapins ou de plus gros animaux comme des bovins ou des moutons. Cependant, cette méthode nécessite l’utilisation et le maintien en laboratoire d’animaux, générant ainsi des problèmes éthiques, de gestion et de coûts non négligeables. D’autre part, les spécificités d’hôtes de certaines espèces de tiques peuvent rendre de tels gorgements impossibles, notamment lorsque des animaux sauvages sont impliqués. De même, certaines infections expérimentales impliquant des animaux ne pouvant être maintenus en captivité ou dont l’élevage est difficile ne peuvent pas être réalisées. Enfin, la quantité d’agents infectieux ingérée par les tiques dans de telles conditions d’infection ne peut pas être contrôlée précisément.

    Gorgement sur membrane

    3Pour pallier ces difficultés, des systèmes de gorgement sur membrane ont été mis en place afin, à la fois, de gorger et d’infecter des tiques par divers agents infectieux. De nombreuses espèces de tiques ont ainsi été gorgées avec succès par le biais de ces systèmes : R. microplus (Kemp et al., 1975 ; Waladde et al., 1991), A. variegatum (Voigt et al., 1993 ; Young et al., 1996), R. appendiculatus (Waladde et al., 1991 ; Young et al., 1996 ; Musyoki et al., 2004), D. andersoni (Howarth et Hokama, 1983 ; Paine et al., 1983), I. scapularis (Burkot et al., 2001), I. ricinus (Bonnet et al., 2007 ; Krober et Guerin, 2007), A. cajennense adultes (deMoura et al., 1997), H. anatolicum anatolicum, H. dromedarii (Tajeri et Razmi, 2011), A. hebraeum (Kuhnert et al., 1995). Des membranes à la fois d’origine animale (prélevées sur des bovins, lapins, souris, gerbilles) ou artificielles ont été utilisées. L’utilisation de membranes « animales » nécessite l’accès à des animaux et une préparation méticuleuse des peaux pour éviter leur contamination et leur biodégradation (Musyoki et al., 2004 ; Bonnet et al., 2007). Le choix de leur origine va dépendre de l’espèce de tique et de la stase de développement concernées, et de la longueur des pièces buccales déterminant notamment l’épaisseur de la peau que celles-ci peuvent traverser. Les membranes artificielles permettent de s’affranchir des animaux, mais impliquent dans certaines études une période de pré-gorgement délicate sur animal (avec un taux de re-fixation sur la membrane assez aléatoire), leur composition est souvent complexe et elles nécessitent l’utilisation de stimuli d’origine animale, parfois difficiles à mettre au point pour attirer les tiques vers la membrane (poils, extraits animaux, fèces et phéromones de tiques, etc.) (Voigt et al., 1993). Dans tous les systèmes utilisés, les tiques sont enfermées dans un récipient et prélèvent leur repas sanguin à travers une membrane. Il est alors nécessaire de maintenir le sang dans des conditions favorables et attractives pour les tiques (35‑39 °C, avec ou sans CO2, suivant l’espèce de tique concernée) durant toute la durée du gorgement, et de le changer régulièrement dans des conditions stériles.

    4Dans le cas d’une infection par un agent infectieux, les techniques de gorgement sur membrane permettent de se rapprocher au plus près de la réalité physiologique puisque le micro-organisme est ingéré par la tique au moment de son repas sanguin, en même temps que le sang et ses constituants, et ceci de façon continue au cours du repas. De plus, ces techniques permettent de contrôler la quantité d’agents infectieux ingérée par les tiques, ainsi que de tester, lors du repas sanguin, différentes substances à analyser (médicaments, anticorps, attractants, répulsifs, acaricides, etc.). Le poids des tiques à réplétion obtenu par gorgement sur membrane est généralement égal ou inférieur à ce qui est obtenu sur animal vivant, les temps de gorgement plus longs et la proportion de tiques gorgées plus faible, mais des études ont montré des taux de transformation en stase suivante et des succès de ponte équivalents (Voigt et al., 1993 ; Young et al., 1996 ; Musyoki et al., 2004 ; Liu et al., 2014). Ces techniques présentent néanmoins l’inconvénient d’une mise en place et d’une utilisation relativement lourde, ainsi que l’emploi d’antibiotiques, d’antifongiques et d’anti-coagulants dans le repas sanguin.

    Infection par capillaire

    5Dans le but d’éviter de potentielles interactions entre des substances pharmaceutiques artificielles et les agents infectieux, d’autres techniques d’infection des tiques ont aussi été mises en place. Il s’agit tout d’abord de l’infection par capillaire. L’utilisation d’un capillaire insérant les pièces buccales de tiques a été réalisée pour la première fois pour collecter de la salive de D. andersoni (Gregson, 1937). Par la suite, cette technique a été utilisée, après un pré-gorgement sur animal, afin d’étudier l’alimentation des tiques (H. excavatum, H. dromedarii et R. sanguineus) et pour leur faire ingérer différents nutriments (Chabaud, 1950). Depuis, elle a été utilisée à diverses reprises (avant ou après un gorgement sur animal) pour infecter des tiques dans les modèles pathogènes-vecteurs suivants : Leptospira pomona/A. maculatum-D. andersoni (Burgdorfer, 1957), T. parva/R. appendiculatus (Purnell et Joyner, 1967 ; Walker et al., 1979), B. burgdorferi/I. ricinus (Kurtenbach et al., 1994), B. burgdorferi/I. scapularis (Broadwater et al., 2002 ; Korshus et al., 2004), virus Dugbe/A. variegatum (Steele et Nuttall, 1989), E. chaffeensis/A. americanum-D. variabilis-R. sanguineus (Rechav et al., 1999), A. marginale/D. variabilis (Kocan et al., 2005) ou R. montana- R. rhipicephali/D. variabilis (Macaluso et al., 2001). Cette méthode d’infection présente l’avantage de pouvoir évaluer la quantité d’agents pathogènes absorbée par la tique et d’utiliser la voie naturelle d’infection par ingestion, mais s’éloigne des conditions naturelles dans le sens où, ici, l’agent pathogène est ingéré en l’absence de sang, d’un seul coup et en grande quantité, après ou avant le repas sanguin. De même, les indispensables étapes de gorgement sur animal puis détachement forcé des tiques peuvent s’avérer délicates et de succès limité.

    Injection directe de pathogènes dans la tique

    6Enfin, l’infection des tiques peut aussi se faire par injection directe de l’agent pathogène à travers leur cuticule. Cette méthode a été utilisée pour infecter des R. appendiculatus avec le parasite T. parva (Walker et al., 1979 ; Jongejan et al., 1980), D. andersoni avec A. marginale, (Kocan et al., 1986), A. americanum, D. variabilis et R. sanguineus avec Ehrlichia chaffeensis (Rechav et al., 1999), ou encore I. scapularis par B. burgdorferi (Kariu et al., 2011). Dans ce cas, la dose de micro-organisme injectée est bien sûr contrôlée, mais elle n’exclut pas non plus l’utilisation d’animaux pour réaliser les gorgements, et le taux de mortalité des tiques après injection est loin d’être négligeable. L’inconvénient majeur de cette technique réside dans le fait qu’elle est loin de la réalité physiologique, les agents infectieux ne réalisant pas leur cycle de développement naturel (qui passe par l’absorption dans le tube digestif au moment du repas sanguin), rendant ainsi les résultats difficilement extrapolables aux conditions naturelles d’infection.

    Tableau 1. Résumé des avantages et faiblesses des principales techniques de gorgement artificiel utilisées pour infecter des tiques avec différents agents infectieux.

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    Infection par immersion des tiques

    7Ce système a été utilisé afin d’infecter des larves d’Ixodes scapularis avec Borrelia burgdorferi, l’agent bactérien de la maladie de Lyme. Les larves sont immergées pendant 15 ou 45 minutes à 33 °C dans des suspensions de bactéries à faible passage, c’est-à-dire des bactéries qui ont eu peu de passages successifs en culture in vitro et donc ont normalement pu maintenir l’ensemble de leurs plasmides naturels. Les larves infectées ainsi sont capables de retransmettre l’agent infectieux vivant à des souris naïves (Policastro et Schwan, 2003).

    8En conclusion, chacune des méthodes abordées ici présente à la fois des avantages et des inconvénients (cf. tabl. 1) et le choix de la méthode dépend à la fois du modèle analysé et de la question biologique qui est posée.

    Bibliographie

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    10.1111/j.1749-6632.1996.tb53527.x :

    Auteurs

    • Sarah Bonnet

      UMR Bipar Inra-Anses-Enva 14 rue Pierre et Marie Curie 94701 Maisons-Alfort cedex. sbonnet@vet-alfort.fr

    • Nathalie Boulanger

      Centre National de Référence Borrelia EA 7290 Virulence bactérienne précoce, groupe Borréliose de Lyme, Institut de bactériologie 3, rue Koeberlé 67000 Strasbourg. nboulanger@unistra.fr

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    Une maladie de la pauvreté

    Jean-François Schémann

    2008

    Tiques et maladies à tiques

    Tiques et maladies à tiques

    Biologie, écologie évolutive, épidémiologie

    Karen D. McCoy et Nathalie Boulanger (dir.)

    2015

    Des moustiques et des hommes

    Des moustiques et des hommes

    Chronique d’une pullulation annoncée

    Frédéric Darriet

    2014

    Initiation à la génétique des populations naturelles

    Initiation à la génétique des populations naturelles

    Applications aux parasites et à leurs vecteurs

    Thierry De Meeûs

    2012

    Audit des décès maternels dans les établissements de santé

    Audit des décès maternels dans les établissements de santé

    Guide de mise en oeuvre

    Alexandre Dumont, Mamadou Traoré et Jean-Richard Dortonne (dir.)

    2014

    Protection personnelle antivectorielle

    Protection personnelle antivectorielle

    Gérard Duvallet et Ludovic de Gentile (dir.)

    2012

    Cassava-Mealybug interactions

    Cassava-Mealybug interactions

    Paul-André Calatayud et Bruno Le Rü (dir.)

    2006

    Pratique des essais cliniques en Afrique

    Pratique des essais cliniques en Afrique

    Jean-Philippe Chippaux

    2004

    Moustiquaires imprégnées et résistance des moustiques aux insecticides

    Moustiquaires imprégnées et résistance des moustiques aux insecticides

    Frédéric Darriet (dir.)

    2007

    Les anophèles

    Les anophèles

    Biologie, transmission du Plasmodium et lutte antivectorielle

    Pierre Carnevale et Vincent Robert (dir.)

    2009

    Les champignons ectomycorhiziens des arbres forestiers en Afrique de l’Ouest

    Les champignons ectomycorhiziens des arbres forestiers en Afrique de l’Ouest

    Méthodes d’étude, diversité, écologie, utilisation en foresterie et comestibilité

    Amadou Bâ, Robin Duponnois, Moussa Diabaté et al.

    2011

    Lutte contre la maladie du sommeil et soins de santé primaire

    Lutte contre la maladie du sommeil et soins de santé primaire

    Claude Laveissière, André Garcia et Bocar Sané

    2003

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    Le trachome

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    Initiation à la génétique des populations naturelles

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    Thierry De Meeûs

    2012

    Audit des décès maternels dans les établissements de santé

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    Guide de mise en oeuvre

    Alexandre Dumont, Mamadou Traoré et Jean-Richard Dortonne (dir.)

    2014

    Protection personnelle antivectorielle

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    Gérard Duvallet et Ludovic de Gentile (dir.)

    2012

    Cassava-Mealybug interactions

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    Paul-André Calatayud et Bruno Le Rü (dir.)

    2006

    Pratique des essais cliniques en Afrique

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    Jean-Philippe Chippaux

    2004

    Moustiquaires imprégnées et résistance des moustiques aux insecticides

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    Frédéric Darriet (dir.)

    2007

    Les anophèles

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    Biologie, transmission du Plasmodium et lutte antivectorielle

    Pierre Carnevale et Vincent Robert (dir.)

    2009

    Les champignons ectomycorhiziens des arbres forestiers en Afrique de l’Ouest

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    Méthodes d’étude, diversité, écologie, utilisation en foresterie et comestibilité

    Amadou Bâ, Robin Duponnois, Moussa Diabaté et al.

    2011

    Lutte contre la maladie du sommeil et soins de santé primaire

    Lutte contre la maladie du sommeil et soins de santé primaire

    Claude Laveissière, André Garcia et Bocar Sané

    2003

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    Annexe 4

    Dissection de glandes salivaires de tiques et collecte de salive

    Nathalie Boulanger

    Introduction

    Les tiques, les animaux et l’homme

    Nathalie Boulanger et Karen D. McCoy

    6. L’interface tique‑hôte et la transmission des pathogènes

    Sarah Bonnet, Jean‑Claude George et Nathalie Boulanger

    2. Biologie des tiques

    Sarah Bonnet, Karine Huber, Guy Joncour et al.

    9. Contrôle des populations de tiques et prévention : aspects vétérinaires et humains

    Nathalie Boulanger et Frédéric Stachurski

    Annexe 3

    Élevage de tiques dures et de tiques molles

    Nathalie Boulanger, Olivier Rais et Laurence Vial

    Chapitre 25. Les tiques (Acari : Ixodida)

    Nathalie Boulanger et Karen McCoy

    Annexe 6

    Compléments d’information - Sites internet et ouvrages de référence

    Nathalie Boulanger et Karen D. McCoy

    2. Les répulsifs cutanés

    Nathalie Boulanger et Ludovic de Gentile

    Avant-propos

    Karen D. McCoy et Nathalie Boulanger

    7. Principales maladies transmises par les tiques : épidémiologie, clinique et diagnostic

    Sara Moutailler, Jean-Claude George, Yves Hansmann et al.

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    Dissection de glandes salivaires de tiques et collecte de salive

    Nathalie Boulanger

    Introduction

    Les tiques, les animaux et l’homme

    Nathalie Boulanger et Karen D. McCoy

    6. L’interface tique‑hôte et la transmission des pathogènes

    Sarah Bonnet, Jean‑Claude George et Nathalie Boulanger

    2. Biologie des tiques

    Sarah Bonnet, Karine Huber, Guy Joncour et al.

    9. Contrôle des populations de tiques et prévention : aspects vétérinaires et humains

    Nathalie Boulanger et Frédéric Stachurski

    Annexe 3

    Élevage de tiques dures et de tiques molles

    Nathalie Boulanger, Olivier Rais et Laurence Vial

    Chapitre 25. Les tiques (Acari : Ixodida)

    Nathalie Boulanger et Karen McCoy

    Annexe 6

    Compléments d’information - Sites internet et ouvrages de référence

    Nathalie Boulanger et Karen D. McCoy

    2. Les répulsifs cutanés

    Nathalie Boulanger et Ludovic de Gentile

    Avant-propos

    Karen D. McCoy et Nathalie Boulanger

    7. Principales maladies transmises par les tiques : épidémiologie, clinique et diagnostic

    Sara Moutailler, Jean-Claude George, Yves Hansmann et al.

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    Tiques et maladies à tiques

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    Tiques et maladies à tiques

    Ce livre est cité par

    • Agoulon, Albert. Hoch, Thierry. Heylen, Dieter. Chalvet-Monfray, Karine. Plantard, Olivier. (2019) Unravelling the phenology of Ixodes frontalis, a common but understudied tick species in Europe. Ticks and Tick-borne Diseases, 10. DOI: 10.1016/j.ttbdis.2018.12.009
    • Bourdin, Audrey. Dokhelar, Théo. Bord, Séverine. van Halder, Inge. Stemmelen, Alex. Scherer-Lorenzen, Michael. Jactel, Hervé. (2023) Forests harbor more ticks than other habitats: A meta-analysis. Forest Ecology and Management, 541. DOI: 10.1016/j.foreco.2023.121081
    • Charruau, P. Pérez-Flores, J. Cedeño-Vázquez, JR. Gonzalez-Solis, D. González-Desales, GA. Monroy-Vilchis, O. Desales-Lara, MA. (2016) Occurrence of Amblyomma dissimile on wild crocodylians in southern Mexico. Diseases of Aquatic Organisms, 121. DOI: 10.3354/dao03042
    • Boulanger, Nathalie. (2018) Rôle immunomodulateur de la salive de tique dans la transmission d’agents infectieux. Biologie Aujourd'hui, 212. DOI: 10.1051/jbio/2019001
    • Fu, Wen. Bonnet, Camille. Figoni, Julie. Septfons, Alexandra. Métras, Raphaëlle. (2021) Exploratory Space–Time Analyses of Reported Lyme Borreliosis Cases in France, 2016–2019. Pathogens, 10. DOI: 10.3390/pathogens10040444
    • Rataud, Amalia. Henry, Pierre‐Yves. Moutailler, Sara. Marsot, Maud. (2022) Research effort on birds’ reservoir host potential for Lyme borreliosis: A systematic review and perspectives. Transboundary and Emerging Diseases, 69. DOI: 10.1111/tbed.14305
    • Bourdin, Audrey. Bord, Severine. Durand, Jonas. Galon, Clemence. Moutailler, Sara. Scherer-Lorenzen, Michael. Jactel, Herve. (2022) Forest Diversity Reduces the Prevalence of Pathogens Transmitted by the Tick Ixodes ricinus. Frontiers in Ecology and Evolution, 10. DOI: 10.3389/fevo.2022.891908
    • Dupraz, Marlène. Leroy, Chloé. Thórarinsson, Thorkell Lindberg. d’Ettorre, Patrizia. McCoy, Karen D.. (2022) Within and among population differences in cuticular hydrocarbons in the seabird tick Ixodes uriae. Peer Community Journal, 2. DOI: 10.24072/pcjournal.164

    Tiques et maladies à tiques

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    Bonnet, S., & Boulanger, N. (2015). Annexe 2. In K. D. McCoy & N. Boulanger (éds.), Tiques et maladies à tiques (1‑). IRD Éditions. https://doi.org/10.4000/books.irdeditions.9064
    Bonnet, Sarah, et Nathalie Boulanger. « Annexe 2 ». In Tiques et maladies à tiques, édité par Karen D. McCoy et Nathalie Boulanger. Marseille: IRD Éditions, 2015. https://doi.org/10.4000/books.irdeditions.9064.
    Bonnet, Sarah, et Nathalie Boulanger. « Annexe 2 ». Tiques et maladies à tiques, édité par Karen D. McCoy et Nathalie Boulanger, IRD Éditions, 2015, https://doi.org/10.4000/books.irdeditions.9064.

    Référence numérique du livre

    Format

    McCoy, K. D., & Boulanger, N. (éds.). (2015). Tiques et maladies à tiques (1‑). IRD Éditions. https://doi.org/10.4000/books.irdeditions.9001
    McCoy, Karen D., et Nathalie Boulanger, éd. Tiques et maladies à tiques. Marseille: IRD Éditions, 2015. https://doi.org/10.4000/books.irdeditions.9001.
    McCoy, Karen D., et Nathalie Boulanger, éditeurs. Tiques et maladies à tiques. IRD Éditions, 2015, https://doi.org/10.4000/books.irdeditions.9001.
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